雙縮脲法蛋白質(zhì)含量測(cè)定試劑盒說(shuō)明書(shū)
分光光度法 50T/48S
注意：正式測(cè)定之前選擇 2-3 個(gè)預(yù)期差異大的樣本做預(yù)測(cè)定，確保蛋白濃度在 1～10mg/ml 范圍內(nèi)。
測(cè)定意義：
樣品可溶性蛋白質(zhì)含量常常用于酶活性計(jì)算。此外，可溶性蛋白質(zhì)含量也用于食品等質(zhì)量分析。
測(cè)定原理：
強(qiáng)堿性溶液中，雙縮脲與CuSO4 形成紫色絡(luò)合物；紫色絡(luò)合物顏色的深淺與蛋白質(zhì)濃度成正比，而與蛋白質(zhì)分子量及氨基酸成分無(wú)關(guān)，故可用來(lái)測(cè)定蛋白質(zhì)含量。該方法測(cè)定范圍為 1~10mg 蛋白質(zhì)，適用于蛋白質(zhì)濃度高的樣品，尤其是動(dòng)物材料
自備儀器和用品：
可見(jiàn)分光光度計(jì)、臺(tái)式離心機(jī)、可調(diào)式移液器、1 ml 玻璃比色皿、研缽、冰和蒸餾水。
組成：
產(chǎn)品名稱(chēng) | DE6001-50T/48S | Storage |
試劑一：液體 | 50ml | 4℃ |
標(biāo)準(zhǔn)品：液體 | 1ml | 4℃ |
說(shuō)明書(shū) | 一份 |
標(biāo)準(zhǔn)品：液體 1ml×1 瓶，5 mg/ml，4℃保存。
樣品中可溶性蛋白質(zhì)提?。?/span>
1. 液體樣品：澄清無(wú)色液體樣品可以直接測(cè)定。
2. 組織樣品：按照組織質(zhì)量（g）：提取液體積(ml)為 1：5~10 的比例（建議稱(chēng)取約 0.1g 組織，加入 1ml 提取液（自備，根據(jù)需要選用酶提取緩沖液或者蒸餾水或者生理鹽水）冰浴勻漿，8000g，4℃離心 10min，取上清，即待測(cè)液。（動(dòng)物樣品常常需要稀釋?zhuān)?/span>
3. 細(xì)菌、真菌：按照細(xì)胞數(shù)量（104 個(gè)）：提取液體積（ml）為 500~1000：1 的比例（建議 500 萬(wàn)細(xì)胞加入1ml 提取液），冰浴超聲波破碎細(xì)胞（功率 300w，超聲 3 秒，間隔 7 秒，總時(shí)間 3min）；然后 8000g，4℃，離心 10min，取上清置于冰上待測(cè)。
測(cè)定步驟：
1. 分光光度計(jì)預(yù)熱 30 min，調(diào)節(jié)波長(zhǎng)到 540 nm，蒸餾水調(diào)零。
2. 空白管：取 1 mL 玻璃比色皿，加入 200μl 蒸餾水，1000μl 試劑一，混勻后室溫靜置 15 min，于 540nm 比色，記為 A 空白管。
3. 標(biāo)準(zhǔn)管：取 1 mL 玻璃比色皿，加入 200μl 標(biāo)準(zhǔn)液，1000μl 試劑一，混勻后室溫靜置 15 min，于 540 nm 比色，記為 A 標(biāo)準(zhǔn)管。
4. 測(cè)定管：取 1 mL 玻璃比色皿，加入 200μl 待測(cè)液，1000μl 試劑一，混勻后室溫靜置 15 min，于 540nm 比色，記為 A 測(cè)定管。
注意：空白管和標(biāo)準(zhǔn)管只需測(cè)定一次。
樣品中蛋白質(zhì)濃度計(jì)算公式
C 待測(cè)（mg/mL）= C 標(biāo)準(zhǔn)管×(A 測(cè)定管－A 空白管)÷(A 標(biāo)準(zhǔn)管－A 空白管)
=5×(A 測(cè)定管－A 空白管)÷(A 標(biāo)準(zhǔn)管－A 空白管)
注意事項(xiàng)：
1. 樣品蛋白濃度須在 1~10mg/ml 范圍內(nèi)，低于 1mg/ml 不能用此法，高于 10mg/ml 須做相應(yīng)稀釋。因此測(cè)定前用 1~2 個(gè)樣做預(yù)實(shí)驗(yàn)，確保蛋白濃度在 1~10mg/ml 范圍內(nèi)。
2. 待測(cè)樣品蛋白提取可用生理鹽水、雙蒸水或不含蛋白的 PBS 提取。該法受硫酸銨、Tris 緩沖液干擾，提取液中應(yīng)不含這些物質(zhì)；否則改用BCA 蛋白質(zhì)含量測(cè)定試劑盒。
