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CAR-T研究前沿應(yīng)用|珀金埃爾默與您相約第十九屆中國生物制品年會(CBioPC2019)

閱讀:357      發(fā)布時間:2019-11-13
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 背景介紹: CAR-T療法風(fēng)潮

基于Chimeric antigen receptor T cells (CAR-T)技術(shù)的細(xì)胞治療可謂是當(dāng)下火熱的腫瘤治療方法之一。與早期的基于T細(xì)胞的Adoptive cell transferACT)不同,CAR-T技術(shù)融入B細(xì)胞,也就是抗體的識別能力。因此CAR-T能靶向MHC異常表達(dá)或不表達(dá)的腫瘤細(xì)胞,并能作用于多數(shù)傳統(tǒng)ACT無法靶向的細(xì)胞膜表面靶點[1]。

 

CAR-T原理圖,來源于參考資料[1]

隨著在B細(xì)胞血液腫瘤領(lǐng)域的巨大成功,CAR-T療法的臨床前研究和臨床試驗發(fā)展迅速。目前,就臨床數(shù)目而言,CAR-T療法在腫瘤免疫領(lǐng)域僅次于基于免疫檢查點抑制劑的療法。中國和美國則是推動CAR-T療法臨床轉(zhuǎn)化的主力軍[2]。相較于美國,接近八成的國內(nèi)研究已處于臨床階段。同時,對比2018年,我們可以看到國內(nèi)制藥企業(yè)對于CAR-T療法的布局和推動[2]。

 

CAR-T治療臨床研究數(shù)目,來源于參考資料[2]

當(dāng)下,如何將CAR-T療法的成功復(fù)制至非B細(xì)胞血液腫瘤和實體瘤是該領(lǐng)域研究的關(guān)鍵點和重點。在實體瘤研究方向,體內(nèi)研究和臨床試驗證明Therapeutic window的存在,并發(fā)現(xiàn)CAR-T細(xì)胞能清除靶點陰性的腫瘤細(xì)胞,為攻克實體瘤提供一絲曙光[2]。除了腫瘤領(lǐng)域,CAR-T研究已衍生至心臟損傷[3],HIV[4]和自身免疫[5]等多個疾病領(lǐng)域,成為了非常有潛力的新興治療技術(shù)。

在此,結(jié)合一線的研究進(jìn)展,我們向大家介紹珀金埃爾默生命科學(xué)產(chǎn)品線針對CAR-T研究的應(yīng)用切入點,助力下一代CAR-T療法研發(fā)。

體外研究應(yīng)用:

針對CAR-T研究,珀金埃爾默主要圍繞體外和體內(nèi)兩個方向提供完善的解決方案。其中,針對體外研究,我們關(guān)注體外CAR-T細(xì)胞的活化、活力檢測和分析。與Cytotoxic T細(xì)胞活化類似,CAR-T細(xì)胞的活化通常伴隨著細(xì)胞因子的分泌、CAR-T細(xì)胞的增殖和后特異性靶向腫瘤細(xì)胞的殺傷 [6]。針對這三個過程,我們均提供對應(yīng)的基于放射/非放射平臺的金標(biāo)準(zhǔn)解決方案。在此,我們關(guān)注CAR-T細(xì)胞核心功能指標(biāo):細(xì)胞殺傷的檢測。

1. 靈活應(yīng)用細(xì)胞殺傷解決方案

與傳統(tǒng)的基于化合物和抗體的直接細(xì)胞殺傷不同,基于CAR-T細(xì)胞的腫瘤殺傷是細(xì)胞-細(xì)胞相互作用的結(jié)果。因此,在分析殺傷中,檢測方法必須能夠特異區(qū)別靶細(xì)胞(腫瘤細(xì)胞)和效應(yīng)細(xì)胞(CAR-T細(xì)胞)。常見的細(xì)胞活力檢測法,如MTT、CCK-8和ATP法等,則不適于直接用于CAR-T介導(dǎo)的特異細(xì)胞殺傷檢測。針對區(qū)分的需求,我們提供兩大金標(biāo)準(zhǔn)檢測法:基于放射的51Cr釋放法和基于非放射的DELFIA® EuTDA細(xì)胞毒法[7]。兩種方法都基于利用探針、特異的標(biāo)記靶細(xì)胞。經(jīng)效應(yīng)細(xì)胞殺傷后,靶細(xì)胞出現(xiàn)裂解,并釋放探針到上清中用于定量殺傷效果。

 

51Cr釋放法檢測原理圖,圖片來源于參考資料[8]

除了支持特異檢測細(xì)胞殺傷外,51Cr釋放法和 DELFIA® EuTDA細(xì)胞毒法的另外一大優(yōu)勢就是靈活性,支持多種細(xì)胞系和原代細(xì)胞作為靶細(xì)胞或效應(yīng)細(xì)胞。例如,在近期的靶向CD19的CAR-T臨床研究中,科研人員通過標(biāo)記腫瘤細(xì)胞,利用51Cr釋放法證明低親和力的CAR-T 具有更強的細(xì)胞殺傷能力。而在后續(xù)的CAR-T無效的病人樣本研究中,基于同樣的檢測方法,科研人員通過標(biāo)記CAR-T細(xì)胞作為靶細(xì)胞,檢測病人針對CAR-T細(xì)胞是否具有免疫反應(yīng)(Anti-CAR反應(yīng))[9]。

 

體外殺傷檢測結(jié)果。CAT為低親和力CAR-T,F(xiàn)MC83為常用CAR-T

   

基于病人臨床樣本的Anti-CAR檢測結(jié)果。圖片來源于參考資料[9]

通過改變靶細(xì)胞,我們提供的方法學(xué)還支持CAR-T療法的安全性分析,例如檢測On target, off tumor脫靶效應(yīng)帶來的細(xì)胞毒性[10]。此外,同種異體反應(yīng)也逐漸成為CAR-T療法安全性評價的一個重要考慮因素。針對此,我們提供DELFIA®BrdU 細(xì)胞增殖方法,通過混合淋巴細(xì)胞反應(yīng)衡量CAR-T細(xì)胞的同種異體反應(yīng)[11]。

 

利用51Cr釋放法檢測脫靶效應(yīng)的細(xì)胞毒性,圖片來源于參考資料[10];

 

基于DELFIA®BrdU 細(xì)胞增殖方法檢測CAR-T細(xì)胞的同種異體反應(yīng),圖片來源于參考資料[11]

2. 深入成像技術(shù)應(yīng)用

相較于分子檢測,成像技術(shù)能提供二維到三維的靜止或動態(tài)空間信息。因此基于成像的高通量篩選更具有選擇性,適合差異化篩選。例如,在2017年的臨床研究中,科研人員利用Opera Phenix高內(nèi)涵平臺,結(jié)合腫瘤細(xì)胞/正常細(xì)胞混合樣本進(jìn)行差異化篩選。利用成像技術(shù)的優(yōu)勢,研究能發(fā)現(xiàn)只作用于腫瘤細(xì)胞、不影響正常細(xì)胞活力的藥物,提升了臨床用藥的安全性[12]。除了提升選擇性外,成像篩選還能支持幾小時到幾天的長程篩選,因此可用于檢測免疫細(xì)胞的多輪殺傷能力[13]。

 

基于Opera Phenix 的高通量差異篩選流程圖,圖片來源于參考資料[12]

毫無疑問,憑借其生理相關(guān)性和支持高通量篩選的優(yōu)勢,3D類器官和微組織球研究是當(dāng)下多個科研和制藥領(lǐng)域的熱門主題和方向,也是我們成像應(yīng)用的重要關(guān)注點。針對多種腫瘤,基于小分子藥物的研究已證實3D腫瘤組織樣本能有效預(yù)測藥物敏感度[14]。在CAR-T和細(xì)胞治療研究方向,3D水平研究也逐漸嶄露頭角。在近期的研究中,Opera Phenix高內(nèi)涵平臺被用于衡量、對比靶向MesothelinCAR-T細(xì)胞的殺傷能力 [15] 。除了3D水平研究外,活細(xì)胞動態(tài)監(jiān)測也會成為我們針對CAR-T研究的主要開拓點。與干細(xì)胞類似,CAR-T細(xì)胞和免疫細(xì)胞在活化和行使功能過程中是代謝水平高度動態(tài)的,并持續(xù)存在和癌細(xì)胞及其他免疫細(xì)胞的相互作用 [16]。因此,基于成像的動態(tài)分析非常適合在體外深入解析CAR-T細(xì)胞的功能潛能。

 

利用Opera Phenix 檢測CAR-T細(xì)胞針對3D腫瘤樣本的殺傷能力,圖片來源于參考資料[15]

體內(nèi)研究應(yīng)用:

針對體內(nèi)研究,珀金埃爾默主要提供完善的活體成像解決方案,包括性能的IVIS系列和對應(yīng)的細(xì)胞株和熒光染料。作為主流的活體成像平臺,IVIS系列被廣泛用于臨床前CAR-T研究和突破實體瘤治療的多種瓶頸[1]。在此,我們主要介紹助力下一代CAR-T研發(fā)的兩大利器:腫瘤成像和免疫細(xì)胞成像。

1. 腫瘤活體成像:協(xié)助建立復(fù)雜的腫瘤模型

圍繞CAR-T臨床前研發(fā),IVIS系列能協(xié)助建立多種常見的實體瘤和血液瘤模型,靈敏追蹤腫瘤的進(jìn)展和動態(tài)評估CAR-T細(xì)胞的抗癌作用。在此基礎(chǔ)上,IVIS系列還可以和多種新興的技術(shù)聯(lián)用,協(xié)助建立復(fù)雜的腫瘤表型。例如,在靶向多發(fā)性骨髓瘤的CAR-T臨床治療中,一個常見的挑戰(zhàn)就是BCMA陰性腫瘤細(xì)胞的存在和出現(xiàn)。對此,研究結(jié)合Crispr技術(shù),建立融合螢火蟲報告基因的BCMA陰性腫瘤細(xì)胞,并將其混合BCMA陽性腫瘤細(xì)胞建立腫瘤模型?;铙w成像數(shù)據(jù)可以看出,BCMA CAR-T細(xì)胞無法作用于BCMA陰性腫瘤細(xì)胞,而靶向GPRC5D的CAR-T細(xì)胞能有效*BCMA陰性腫瘤細(xì)胞[17]。

 

結(jié)合Crispr技術(shù)的腫瘤模型建立和活體成像檢測,圖片來源于參考資料[17]

同樣基于Crispr技術(shù),近期的研究利用活體成像平臺開展和驗證靶向CD8 T細(xì)胞的活體Crispr篩選,為靶向膠質(zhì)母細(xì)胞瘤的免疫治療提供了新的靶點[18]。通過改變接種的流程和治療策略,IVIS系列還可以協(xié)助建立腫瘤復(fù)發(fā)、晚期腫瘤和病人來源移植腫瘤模型。

 

基于Crispr技術(shù)的體內(nèi)篩選驗證流程,圖片來源于參考資料[18]

2. 免疫細(xì)胞活體成像:直觀展示體內(nèi)免疫細(xì)胞-腫瘤細(xì)胞相互作用

除了腫瘤細(xì)胞成像,我們還能通過標(biāo)記CAR-T細(xì)胞或其他免疫細(xì)胞進(jìn)行活體成像[17]。該應(yīng)用對于CAR-T和其他免疫療法的研究尤為重要。因為通過活體成像,我們能直觀的監(jiān)測、分析免疫細(xì)胞的體內(nèi)動態(tài)分布和遷移等關(guān)鍵的信息。鑒于CAR-T細(xì)胞體內(nèi)的擴(kuò)增、遷移和腫瘤部位的殺傷功能是當(dāng)下CAR-T臨床應(yīng)用的主要限制因素[1]。這些信息的獲得對于新一代CAR-T研發(fā)至關(guān)重要。

在近期的一份研究中,科研人員展示了CAR-T細(xì)胞遷移能力對于殺傷效果的重要性[19]。利用腫瘤細(xì)胞,尤其是在輻射處理后,會過表達(dá)IL-18的特點,研究人員改造CAR-T細(xì)胞,使其過表達(dá)IL-18受體 CXCR-1或CXCR-2來提升體內(nèi)的遷移能力。結(jié)合帶有報告基因的CAR-T細(xì)胞和過表達(dá)遠(yuǎn)紅外蛋白iRFP720的腫瘤細(xì)胞,研究就能直觀追蹤和對比免疫細(xì)胞的分布變化和腫瘤的進(jìn)展情況,做到體內(nèi)水平的細(xì)胞細(xì)胞相互作用研究。相較于對照細(xì)胞,改造的CAR-T細(xì)胞具有更強的遷移能力和殺傷腫瘤能力。同時,在晚期腫瘤模型上,研究證實未改造CAR-T細(xì)胞主要分布于外周,不能有效靶向腫瘤部位[19]。

 

CAR-T體內(nèi)模型的CAR-T細(xì)胞成像(左,化學(xué)發(fā)光)和腫瘤細(xì)胞成像(中,熒光);右圖為對應(yīng)統(tǒng)計數(shù)據(jù),圖片基于參考資料[19]

進(jìn)一步結(jié)合免疫熒光技術(shù),研究證實了由IVIS采集的化學(xué)發(fā)光信號能有效反映治療早期的CAR-T細(xì)胞浸潤情況,是腫瘤微環(huán)境免疫細(xì)胞活體追蹤的有力手段。同時,治療早期的化學(xué)發(fā)光信號也能有效預(yù)測小鼠的生存時間,為CAR-T療效預(yù)測提供了新的切入點。后,同時結(jié)合腫瘤和CAR-T細(xì)胞活體成像,我們還能做到靶向CAR-T細(xì)胞功能水平的持續(xù)監(jiān)測。在腫瘤消退后,我們再次植入腫瘤細(xì)胞,建立Re-challenge模型,通過活體成像直觀評價CAR-T細(xì)胞的長期分布和功能[19]。

 

利用免疫熒光和活體成像技術(shù)追蹤治療早期CAR-T細(xì)胞的侵潤情況;CD45指示CAR-T細(xì)胞,圖片來源于參考資料[19]

參考資料:

1. Robbie G. Majzner and Crystal L. Mackall?.Clinical lessons learned from the first leg of the CAR T cell journey. Nat Med. 2019 Sep;25(9):1341-1355.

2. Jia Xin Yu, et al. The global pipeline of cell therapies for cancer Nat Rev Drug Discov. 2019 Oct;18(11):821-822.

3. Haig Aghajanian, et al. Targeting cardiac fibrosis with engineered T cells. Nature. 2019 Sep;573(7774):430-433.

4. Herzig E, et al. Attacking Latent HIV with convertibleCAR-T Cells, a Highly Adaptable Killing Platform. Cell. 2019 Oct 31;179(4):880-894.e10.

5. Taking CAR-T Cells Beyond Cancer: A New Therapy for Autoimmune Disease https://www.labiotech.eu/interviews/car-t-cells-txcell-treg-cells/

6. Restifo NP , et al. Adoptive immunotherapy for cancer: harnessing the T cell response. Nat Rev Immunol. 2012 Mar 22;12(4):269-81. 

7. 細(xì)胞治療干貨 | 免疫細(xì)胞殺傷經(jīng)典案例https://mp.weixin.qq.com/s/47krDPy-vsxSP91T1GDw

8. van der Haar Àvila I , et al.  Evaluating Antibody-Dependent Cell-Mediated Cytotoxicity by Chromium Release Assay. Methods Mol Biol. 2019;1913:167-179.

9. Ghorashian S , et al. Enhanced CAR T cell expansion and prolonged persistence in pediatric patients with ALL treated with a low-affinity CD19 CAR. Nat Med. 2019 Sep;25(9):1408-1414

10. Fisher J , et al.  Engineering γδT cells limits tonic signaling associated with chimeric antigen receptors. Sci Signal. 2019 Sep 10;12(598).

11. Chan WK, et al. Chimeric antigen receptor-redirected CD45RA-negative T cells have potent antileukemia and pathogen memory response without graft-versus-host activity. Leukemia. 2015 Feb;29(2):387-95.

12. Snijder B, et al. Image-based ex-vivo drug screening for patients with aggressive haematological malignancies: interim results from a single-arm, open-label, pilot study. Lancet Haematol. 2017 Dec;4(12):e595-e606.

13. Hernandez-Hoyos G, et al. MOR209/ES414, a Novel Bispecific Antibody Targeting PSMA for the Treatment of Metastatic Castration-Resistant Prostate Cancer. Mol Cancer Ther. 2016 Sep;15(9):2155-65.

14. Lee JK, et al. Pharmacogenomic landscape of patient-derived tumor cells informs precision oncology therapy;Nat Genet. 2018 Oct;50(10):1399-1411.

15. Zhang Z, et al.Modified CAR T cells targeting membrane-proximal epitope of mesothelin enhances the antitumor function against large solid tumor. Cell Death Dis. 2019 Jun 17;10(7):476.

16. Sukumar M, et al.Metabolic reprograming of anti-tumor immunity. Curr Opin Immunol. 2017 Jun;46:14-22.

17. Smith EL, et al.GPRC5D is a target for the immunotherapy of multiple myeloma with rationally designed CAR T cells. Sci Transl Med. 2019 Mar 27;11(485).

18. Ye L, et al.In vivo CRISPR screening in CD8 T cells with AAV-Sleeping Beauty hybrid vectors identifies membrane targets for improving immunotherapy for glioblastoma. Nat Biotechnol. 2019 Nov;37(11):1302-1313.

19. Jin L, et al.CXCR1- or CXCR2-modified CAR T cells co-opt IL-8 for maximal antitumor efficacy in solid tumors. Nat Commun. 2019 Sep 5;10(1):4016.

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第十九屆中國生物制品年會(CBioPC2019)將在北京會議中心舉行。本屆年會適逢建國七十周年大慶和中國生物百年華誕,特以“展示新中國生物制品七十年成就、回顧中國生物制品百年歷史傳承”為主題,開展隆重、熱烈和豐富多彩的學(xué)術(shù)交流,產(chǎn)業(yè)交流和行業(yè)交流。珀金埃爾默公司作為生物制藥行業(yè)的儀器&試劑供應(yīng)商,一直致力于為生物藥物研發(fā)的科學(xué)家們提供的應(yīng)用方案、的服務(wù)和開放的交流平臺,會議期間珀金埃爾默將帶來精彩報告,報告內(nèi)容皆干貨,展臺活動亦精彩,期待在D07展位與您見面。

報告題目:從基因到表型組學(xué)的藥物研發(fā)一體化智能平臺

報告人:珀金埃爾默市場開發(fā)主管 徐雍羽博士

報告時間:11309:20-9:45

報告地點:細(xì)胞治療與基因治療分會場

 

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