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BIA Separations!讓病毒純化更高效---基因治療

來源:上海精瑞科學儀器有限公司   2020年04月28日 15:28  

基因治療是目前生物醫(yī)藥領域熱門的話題之一,生物醫(yī)藥行業(yè)對基因治療持續(xù)高漲的熱情,令該領域許多公司開始將一次治愈性基因療法,作為其開發(fā)的戰(zhàn)略核心。
   有行業(yè)報告顯示,未來預計 6 年內,將有多達 60 種基因療法獲得批準,這些基因療法在 2024 年的銷售額將達到 146 億美元。
   
基因治療的核心是基因載體,病毒載體占據(jù)著主導地位。目前腺相關病毒(AAV)和慢病毒(LV)是臨床上廣泛使用的病毒載體。

   從 2012 年荷蘭 UniQure 公司的,世界上 AAV 基因治療藥物 Glybera 在歐盟獲上市,到 2016 年 GSK 與意大利 San Raffaele  合作開發(fā)的 LV 基因治療藥物 Strimvelis 再次在歐盟獲批,再到 2017 年諾華獲得 FDA 腫瘤藥物咨詢委員會以 10:0 的投票結果,一致批準的自體回輸 CAR-T 細胞療,及同年 Spark Therapeutics 公司獲 FDA 批準的一個傳疾病的基因治療藥物 Luxturna,AAV 和 LV 越來越成為基因治療的主角。AAV 和 LV 大都采用質粒瞬時轉染方法生產(chǎn),從而高質量、高純度的質粒是制 AAV、LV 等病毒載體的前提條件

  質粒是常見的分子生物學工具,是一段 DNA 雙螺旋結構。而抽提質粒幾乎是分子生物學基礎實驗之一。

  科研水平的實驗,通常的質粒抽提試劑盒就足以滿足微克至數(shù)毫克級的需求,但是如果需要大規(guī)模制備病毒載體,試劑盒的質粒產(chǎn)量就非常的力不從心了。
  此外,包裝病毒通常需要三個質?;蛩膫€質粒,每個質粒大小、序列都不一樣,上游表達量也有區(qū)別,甚至穩(wěn)定性都有差異。

   面對如此眾多品種的質粒,有沒有一種質粒 DNA 純化平臺,能夠適用多種質粒的、可放大的,滿足基因治療、細胞治療和疫苗的高純度和同質性的標準要求,并且還需要有效,穩(wěn)健和可擴展的下游過程呢?



 

   接下來為大家隆重介紹 BIA Separations 提供的,基于對流相互作用介質(CIM)層析整體柱的兩步質粒 DNA(pDNA)純化平臺!
   該方法除了具有以上全部優(yōu)點,并且可以明顯降低純化時間,提高生產(chǎn)效率,使其成為 GMP 環(huán)境下的大規(guī)模 pDNA 純化的選擇。
   該方法專為純化大分子和納米顆粒的整體柱而設計,可實現(xiàn)快速操作,高流量,同時提供動態(tài)結合能力和分辨率。



 

首先要為整個過程中的核心——兩步層析步驟,準備細菌培養(yǎng)液
 

1. 大腸桿菌收獲、裂解-堿裂解:
 

這是快速高效純化質粒 DNA 亞型的基礎。
 

操作建議:
 

  先收集菌體;
  然后采用堿性裂解法制備原料;

  再將細菌細胞(通常是細胞生物質或細胞沉淀)懸浮在 50 mMTris-HCl,10 mM EDTA,pH8.0 中;

  通過加入等體積的 0.1-0.4M NaOH,1%SDS 進行裂解。

2. 裂解液濃縮:
 

氯化鈣沉淀后澄清,除去了大量的主要樣品雜質

???????   裂解后,懸浮液變粘稠,通過加入與懸浮緩沖液等體積的,4-8℃ 冷卻的 3M CH 3 COOK(pH 5.5)沉淀細胞碎片和 SDS 復合物。

???????   在溫和混合下,緩慢加入 CaCl2 并孵育 15 分鐘。

TIPS:
 

1. 氯化鈣用作沉淀劑,以去除 RNA、基因組 DNA 和其他雜質;

2. 較高濃度的雜質需要 CaCl2 濃度高達 1M;

3. 考慮測試多種濃度并評估產(chǎn)品中雜質的有效去除和未受影響的 pDNA 產(chǎn)量;

4. 加入速度應該很慢,以防止局部溫度上升;

5. 孵育后,進行一系列澄清步驟,從離心或粗過濾開始,例如 80μm 深度過濾,并以 1-5μm 過濾結束。

(低溫有利于沉淀,混合過程應該溫和操作,以防止 DNA 降解。)

 


 

前面 blabla 說了那么多,然而純化才是本工藝的精華所在。
 

BIA Separations 的二步純化工藝的穩(wěn)健性、連貫性、時效性,均堪稱教科書式的經(jīng)典。
 

首先純化的柱子,通過弱陰離子交換,濃縮 pDNA 并去除大部分 HCP、mRNA 和基因組 DNA;
 

第二步利用疏水相互作用色譜(HIC)的拋光步驟,進一步從超螺旋(SC)治療級 pDNA 中除去開環(huán)(OC)和線性 pDNA 亞型。
 

兩步純化的作用功能明確、互相合作,大大節(jié)省操作步驟和時間。



 

???????   AEX 色譜柱(CIMmultus™DEAE)濃縮 pDNA,并去除大部分 HCP、mRNA 和基因組 DNA。

???????   在弱陰離子交換柱上捕獲質粒 DNA,其中除去剩余的 RNA 和蛋白質,樣品結合需要低電導率,通過稀釋實現(xiàn)。 

???????   隨著增加 NaCl 的梯度洗脫,首先洗脫 RNA,然后洗脫質粒 DNA。

 

層析條件
 

Monolithic column:

CIMmultus™  DEAE(2 µm)*1

phase:

Equilibration  buffer A1: 50 mM Tris, 10 mM EDTA,   pH 7.2

 

Washing buffer  A2: 50 mM Tris, 10 mM EDTA, 0.6 M   NaCl, pH 7.2

 

Elution buffer  A3: 50 mM Tris, 10 mM EDTA, 1 M   NaCl, pH 7.2

Working flow rates:

0.5 – 5 column volume (CV) /min (具體取決于樣品特性,使用的層析設備和色譜柱尺寸)

*1 選擇色譜柱體積,取決于需要處理的樣品量。
 

層析方法
 

1.  用去離子水稀釋細菌裂解物至電導率為 35-40mS / cm。稀釋取決于樣品制備過程中添加的 CaCl2 濃度。

2.  將稀釋的樣品用 0.45μm 過濾器進行過濾。

3.  將 20CV 的緩沖液 A1 平衡 DEAE 柱。

4.  將澄清的稀釋細菌裂解液進行上樣。

5.  用 20 CV 的緩沖液 A1 對色譜柱進行流洗。

6.  用 20 CV 的緩沖液 A2 對色譜柱進行流洗。

7.  用 20 CV 的緩沖液 A3(以半工作流速)洗脫并收集 pDNA。


圖 1:AEX CIMmultus™DEAE(2μm)柱上的質粒 DNA 洗脫曲線



 

???????    在高配體密度丁基修飾的(CIMmultus TM C4 HLD)整體柱上,利用疏水相互作用色譜柱(HIC)的拋光步驟,進一步從        超螺旋(SC)治療級 pDNA 中除去開環(huán)(OC)和線性 pDNA 亞型。

??????? ???????   為了富集質粒 DNA 的超螺旋亞型,將 DEAE 洗脫液上樣到高配體密度丁基柱(C4 HLD)上。 

??????? ???????   該步驟進一步去除了雜質。

 

層析條件

 

phase:

Equilibration  buffer B0:   50 mM Tris, 10 mM EDTA, 3 M   (NH4)2SO4, pH 7.2

 

Washing  buffer  B1: 50 mM Tris, 10 mM EDTA, 1.7  M (NH4)2SO4, pH 7.2

 

Adjustment  buffer: 4 M (NH4)2SO4

 

Elution  buffer  B2: 50 mM Tris, 10 mM EDTA, 0.4  M (NH4)2SO4 , pH 7.2

 

Regeneration  buffer A1: 50 mM Tris, 10 mM EDTA, pH 7.2

Working flow  rates:

0.5 – 5 CV/min (具體取決于樣品特性、使用的層析設備和色譜柱尺寸)

*2 選擇色譜柱體積,取決于需要處理的樣品量。
 

層析方法

 

1.  調節(jié)來自 DEAE 柱的含 pDNA 洗脫液,每 1 體積(V)洗脫液加入 3 體積(V)的 4M(NH4)2SO4。

2.  用 20CV 的緩沖液 B0 來平衡 C4 HLD 柱。

3.  將 DEAE 柱洗脫的 pDNA 組份上樣。

4.  用 20 CV 的緩沖液 B1 流洗色譜柱。

5.  用緩沖液 B2(以半工作流速)洗脫并收集 pDNA。

6.  用 30 CV 的緩沖液 A1 再生色譜柱。

7.  加樣 3 次后,對柱子進行清洗。


圖 2:在 HIC CIMmultus TM C4 HLD(2μm)柱上分離超螺旋質粒 DNA



 

·  從 C4 HLD 柱洗脫的超螺旋 pDNA 組份含有硫酸銨,必須在生物應用質粒之前將其除去。

·  緩沖液交換可通過透析濾過或體積排除色譜等方法進行。

·  配置和填充可能需要額外的處理。
 

二步法層析過程分析:

 

???????    質粒 DNA 制造成功的關鍵是實時過程控制方法,確保終產(chǎn)品中高百分比的超螺旋 pDNA。 

??????????   CIMac™pDNA 分析柱可用于監(jiān)測降解產(chǎn)物(開環(huán)和線性 pDNA),去除雜質(RNA),并確保每個生產(chǎn)步驟都能產(chǎn)生預期的超螺旋 pDNA 量。

???????   ???????CIMac™pDNA 分析柱還用于超螺旋質粒 DNA 含量的質量控制。


圖 3:使用 CIMac™pDNA-0.3 分析柱的質粒 DNA 亞型含量的質量控制

 

結果和結論:
 

??????? ?????  通過優(yōu)化裂解、沉淀和兩種色譜步驟相結合,可生產(chǎn)滿足所有監(jiān)管要求的純 pDNA。

??????? ???????  可以完成去除 99% 以上的主要雜質(RNA,基因組 DNA,宿主細胞蛋白,內毒素和開環(huán) pDNA)。

??????? ???????  此外,快速(大腸桿菌的 pDNA 提取和純化可在幾小時內完成),可重復的過程可降低運營成本并提高工廠生產(chǎn)率。 

??????? ???????  *的整體特性有助于該過程的直接可擴展性,涵蓋從小規(guī)模實驗室到大規(guī)模工業(yè)純化 pDNA 的生產(chǎn)水平。

Table 1: Process results.

 

Process  yield

>  80 %

A260/280

1.92

Homogeneity  (SC pDNA)

>  97 %

HCD  – removed

>  99.5 %

HCP  - removed

>  99 %

Endotoxin

<  2 EU/mg pDNA

RNA  - removed

>  99 %

 

點評 
 

目前市面上有不少質粒純化工藝方案,但是比較下來,BIA 二步法純化工藝具有兩大優(yōu)勢:
 

???????  效率明顯提高

只需兩步色譜和高流速的整體柱色譜方案,減少工藝步驟(提高回收率)并加快純化速度,從而顯著提高生產(chǎn)率。
 

???????   靈活放大

由于特定的整體柱設計,質粒 DNA 過程可以快速擴展到更大的單位。 

在 1 毫升色譜柱上設計的工藝可以輕松轉移到試驗和生產(chǎn)規(guī)模。

在 8L 色譜柱上單次運行可以產(chǎn)生 48 g 藥物級 scDNA。
 

Table 2: Scale up options.

 

Column size

pDNA  purified per cycle

1  mL

6  mg

8  mL

48  mg

80  mL

480  mg

800  ml

4.8  g

8000  mL

48  g

 

十多年來,BIA Separations 一直是高效率質粒純化的好選擇。它不僅提供整體柱和平臺模板,還提供定制的純化服務,以*您的質粒 DNA 純化需求

159 0176 2218(VX同號)

 


 

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