一、引言

二、陽離子脂質(zhì)體介導(dǎo)真核細(xì)胞基因轉(zhuǎn)染的原理

三、實(shí)驗(yàn)材料與方法

（一）實(shí)驗(yàn)材料

1. 細(xì)胞系：選用常見的真核細(xì)胞系，如 HeLa 細(xì)胞（人宮頸癌細(xì)胞）、HEK293 細(xì)胞（人胚腎細(xì)胞）等，這些細(xì)胞系具有生長迅速、易于培養(yǎng)和轉(zhuǎn)染等特點(diǎn)，適合用于基因轉(zhuǎn)染研究。

2. 質(zhì)粒構(gòu)建：構(gòu)建含有特定報告基因（如綠色熒光蛋白基因 GFP）的重組質(zhì)粒，用于監(jiān)測基因轉(zhuǎn)染效率。報告基因的表達(dá)產(chǎn)物易于檢測和定量，能夠直觀地反映轉(zhuǎn)染效果。

3. 陽離子脂質(zhì)體試劑：購買商業(yè)化的陽離子脂質(zhì)體試劑，如 Lipofectamine 系列等，并根據(jù)實(shí)驗(yàn)需求自行制備陽離子脂質(zhì)體，其主要成分包括陽離子脂質(zhì) DOTAP（1,2 - 二油?；?- 3 - 三甲銨丙烷）和輔助脂質(zhì) DOPE（二油酰磷脂酰乙醇胺）等。

4. 培養(yǎng)基及血清：使用適合相應(yīng)細(xì)胞系生長的培養(yǎng)基，如 DMEM（杜氏改良 Eagle 培養(yǎng)基）、RPMI - 1640 培養(yǎng)基等，并添加一定比例的胎牛血清（FBS）以提供細(xì)胞生長所需的營養(yǎng)物質(zhì)和生長因子。

5. 其他試劑：包括用于細(xì)胞消化的胰蛋白酶 - EDTA 溶液、用于細(xì)胞固定和染色的多聚甲醛、用于檢測基因表達(dá)的熒光顯微鏡、流式細(xì)胞儀等。

（二）實(shí)驗(yàn)方法

1. 細(xì)胞培養(yǎng)

• 將凍存的真核細(xì)胞系復(fù)蘇后，接種于培養(yǎng)瓶中，在 37°C、5% CO? 的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。待細(xì)胞生長至對數(shù)生長期時，進(jìn)行傳代培養(yǎng)，以維持細(xì)胞的良好生長狀態(tài)。

• 在進(jìn)行基因轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)前，將細(xì)胞接種于 24 孔板或 6 孔板中，根據(jù)實(shí)驗(yàn)設(shè)計確定接種密度，一般為每孔 1×10? - 5×10? 個細(xì)胞，培養(yǎng) 24 小時，使細(xì)胞貼壁生長并達(dá)到合適的密度。

2. 陽離子脂質(zhì)體 - 核酸復(fù)合物的制備

• 按照陽離子脂質(zhì)體試劑說明書，將適量的陽離子脂質(zhì)體和重組質(zhì)粒分別用無血清培養(yǎng)基稀釋，然后將兩者輕輕混合，室溫孵育 15 - 30 分鐘，使陽離子脂質(zhì)體與核酸充分結(jié)合形成復(fù)合物。在制備復(fù)合物過程中，需要注意脂質(zhì)體與核酸的比例（N/P 比），不同的 N/P 比可能會影響復(fù)合物的穩(wěn)定性和轉(zhuǎn)染效率，通常在 2 - 10 之間進(jìn)行優(yōu)化。

3. 基因轉(zhuǎn)染操作

• 將培養(yǎng)板中的舊培養(yǎng)基輕輕吸出，用無血清培養(yǎng)基洗滌細(xì)胞一次，以去除殘留的血清，因?yàn)檠逯械某煞挚赡軙蓴_陽離子脂質(zhì)體與細(xì)胞的相互作用。

• 將制備好的陽離子脂質(zhì)體 - 核酸復(fù)合物加入到細(xì)胞培養(yǎng)孔中，輕輕晃動培養(yǎng)板，使復(fù)合物均勻分布在細(xì)胞表面。然后在 37°C、5% CO? 的培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng) 4 - 6 小時。

• 培養(yǎng)結(jié)束后，加入含有血清的完整培養(yǎng)基，繼續(xù)培養(yǎng) 24 - 48 小時，使外源基因在細(xì)胞內(nèi)充分表達(dá)。

4. 基因轉(zhuǎn)染效率的檢測

• 熒光顯微鏡觀察：對于攜帶 GFP 等熒光報告基因的轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)，可以在轉(zhuǎn)染后 24 - 48 小時，直接在熒光顯微鏡下觀察細(xì)胞的熒光強(qiáng)度和熒光細(xì)胞比例。綠色熒光越強(qiáng)、熒光細(xì)胞數(shù)量越多，則表明轉(zhuǎn)染效率越高。通過對不同實(shí)驗(yàn)組的細(xì)胞熒光圖像進(jìn)行采集和分析，可以直觀地比較不同轉(zhuǎn)染條件下的轉(zhuǎn)染效果。

• 流式細(xì)胞術(shù)分析：將轉(zhuǎn)染后的細(xì)胞消化收集，用 PBS 緩沖液洗滌細(xì)胞兩次，然后用流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞的熒光強(qiáng)度。流式細(xì)胞儀能夠?qū)Υ罅考?xì)胞進(jìn)行快速檢測和分析，準(zhǔn)確測定熒光陽性細(xì)胞的比例，從而定量評估基因轉(zhuǎn)染效率。同時，還可以通過流式細(xì)胞術(shù)對轉(zhuǎn)染細(xì)胞進(jìn)行分選，進(jìn)一步研究轉(zhuǎn)染成功的細(xì)胞群體的生物學(xué)特性。

• RT - PCR 和 Western blot 檢測：除了熒光檢測外，還可以采用 RT - PCR 和 Western blot 技術(shù)檢測外源基因在轉(zhuǎn)錄和翻譯水平的表達(dá)情況。RT - PCR 可以擴(kuò)增外源基因的特定 mRNA 片段，通過比較不同實(shí)驗(yàn)組中目的基因 mRNA 的相對含量，評估基因轉(zhuǎn)染后的轉(zhuǎn)錄效率。Western blot 則是利用特異性抗體檢測目的蛋白的表達(dá)水平，進(jìn)一步驗(yàn)證基因轉(zhuǎn)染后在蛋白質(zhì)水平的表達(dá)效果。

四、結(jié)果與討論

（一）陽離子脂質(zhì)體 - 核酸復(fù)合物的特性

（二）細(xì)胞培養(yǎng)條件對轉(zhuǎn)染效率的影響

1. 細(xì)胞密度：不同的細(xì)胞接種密度對基因轉(zhuǎn)染效率有顯著影響。當(dāng)細(xì)胞密度過低時，細(xì)胞與陽離子脂質(zhì)體 - 核酸復(fù)合物的接觸機(jī)會減少，轉(zhuǎn)染效率較低；而當(dāng)細(xì)胞密度過高時，細(xì)胞生長狀態(tài)變差，也會降低轉(zhuǎn)染效率。實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示，在 HeLa 細(xì)胞中，當(dāng)接種密度為每孔 2×10? 個細(xì)胞時，轉(zhuǎn)染效率高。

2. 血清含量：血清中的蛋白質(zhì)等成分可能會與陽離子脂質(zhì)體結(jié)合，影響其與核酸的結(jié)合以及與細(xì)胞的相互作用。研究發(fā)現(xiàn)，在轉(zhuǎn)染過程中，無血清培養(yǎng)基能夠提高轉(zhuǎn)染效率，但長時間的無血清培養(yǎng)可能會對細(xì)胞造成損傷。因此，采用在轉(zhuǎn)染時使用無血清培養(yǎng)基，轉(zhuǎn)染后一定時間再加入含血清培養(yǎng)基的方法，可以在保證細(xì)胞活力的同時提高轉(zhuǎn)染效率。

（三）陽離子脂質(zhì)體組成和 N/P 比對轉(zhuǎn)染效率的影響

1. 陽離子脂質(zhì)體組成：不同類型的陽離子脂質(zhì)體對基因轉(zhuǎn)染效率有明顯差異。以 DOTAP/DOPE 為基礎(chǔ)的陽離子脂質(zhì)體在多種真核細(xì)胞系中表現(xiàn)出較好的轉(zhuǎn)染效果。通過改變輔助脂質(zhì)的種類和比例，可以進(jìn)一步優(yōu)化陽離子脂質(zhì)體的性能。例如，添加適量的膽固醇可以提高脂質(zhì)體的穩(wěn)定性和膜融合能力，從而提高轉(zhuǎn)染效率。

2. N/P 比：N/P 比是影響陽離子脂質(zhì)體 - 核酸復(fù)合物形成和轉(zhuǎn)染效率的關(guān)鍵因素。在較低的 N/P 比時，脂質(zhì)體與核酸的結(jié)合不完整，復(fù)合物穩(wěn)定性較差，轉(zhuǎn)染效率較低；隨著 N/P 比的增加，轉(zhuǎn)染效率逐漸升高，但當(dāng) N/P 比過高時，如超過 10，會導(dǎo)致細(xì)胞毒性增加，轉(zhuǎn)染效率反而下降。在 HEK293 細(xì)胞中，N/P 比為 5 時轉(zhuǎn)染效率高，同時細(xì)胞毒性相對較低。

（四）轉(zhuǎn)染時間對轉(zhuǎn)染效率的影響

五、結(jié)論