譜系追蹤技術(shù)猶如一把解鎖生命奧秘的“時光機”,通過為每個細胞賦予 的“條形碼”,記錄并分析這些信息,構(gòu)建出細胞家族的“族譜”——細胞譜系樹。該技術(shù)能夠追溯生物體內(nèi)每個細胞的起源與分化歷程,揭示細胞從胚胎發(fā)育到成熟個體的動態(tài)演變過程。這項技術(shù)不僅清晰展現(xiàn)了細胞間的親緣關(guān)系,還記錄了它們在時間和空間上的動態(tài)變化,為深入理解發(fā)育、疾病和再生等生命過程提供了關(guān)鍵線索,其應(yīng)用場景包括發(fā)育生物學、腫瘤研究、免疫學和再生醫(yī)學等。隨著單細胞測序等高新技術(shù)的不斷發(fā)展,目前常見的譜系追蹤技術(shù)主要有如下幾種:
表1.常見譜系追蹤技術(shù)原理及特點
近日,中國科學院廣州生物醫(yī)藥與健康研究院彭廣敦研究團隊的最新突破,為譜系追蹤技術(shù)注入了新的活力。該團隊成功開發(fā)出新型單細胞譜系示蹤技術(shù)——DuTracer。該技術(shù)創(chuàng)新性地結(jié)合了CRISPR-Cas9和Cas12a兩種基因編輯工具,顯著提升了細胞譜系追蹤的精度和深度[3]。傳統(tǒng)的細胞譜系追蹤方法,因技術(shù)限制致使信息記錄不全,而基于CRISPR的基因編輯技術(shù)提高了分辨率,卻存在靶點間大片段刪除難題,如同在記錄家族歷史時丟失關(guān)鍵代際信息。DuTracer的創(chuàng)新之處在于同時利用Cas9和Cas12a兩種核酸酶,并通過控制它們的激活時間,避免多靶點同時編輯引發(fā)的示蹤信息丟失。實驗顯示,該技術(shù)在小鼠胚胎干細胞和類器官模型中大幅降低了有害刪除事件,且記錄的細胞分裂層級更深,能夠更精準地還原細胞分化路徑。
圖1.DuTracer設(shè)計原理
針對基于CRISPR-Cas9等基因編輯工具的譜系追蹤技術(shù),翌圣生物可提供一系列高品質(zhì)Cas蛋白及相關(guān)產(chǎn)品,助力研究人員更高效、更精準地完成基因編輯實驗,推動細胞譜系追蹤研究邁向新高度。
接下來,小編將為大家重點推薦幾款明星產(chǎn)品,助您輕松開啟科研探索之旅!
Cas9蛋白
Cas9 Nuclease (Cat#14701ES)
Cas9 Nuclease來源于野生型釀膿鏈球菌S. pyogenes,是依賴RNA介導的內(nèi)切核酸酶,可以特異地切割雙鏈DNA(在DNA PAM存在的情況下,也可以切割單鏈DNA或單鏈RNA)。Cas9切割位點位于目標序列內(nèi),離PAM(NGG)區(qū)3個堿基。本產(chǎn)品經(jīng)過密碼子優(yōu)化及核定位信號(NLS)設(shè)計,由大腸桿菌重組表達而來,編輯效率高,可用于細胞(造血干細胞、T細胞等)的基因修飾,也可用于分子診斷,檢測病原體等。
A:體外切割測試:3批次體外切割活性均達98%以上;
B:體內(nèi)基因敲除,敲除效率與進口品牌一致。
圖2.Cas9 Nuclease體外切割活性及基因敲除效率結(jié)果
Cas12蛋白
ArCas12a Nuclease (Cat#14702ES)
ArCas12a核酸內(nèi)切酶,源自Agathobacter rectalis細菌的CRISPR系統(tǒng),別名Cpf1,是一個包含1263個氨基酸的單體蛋白。Cas12a缺乏HNH結(jié)構(gòu)域,可單獨利用其RuvC結(jié)構(gòu)域在CRISPR RNA(crRNA)引導下識別位于靶標核酸5’端富含胸腺嘧啶(T)的PAM區(qū)而啟動對靶標DNA的切割,已成功用于許多哺乳動物和植物的基因組編輯。此外Cas12a還具有反式切割活性,可不加選擇地切割反應(yīng)體系中的非靶標單鏈DNA。與LbCas12a/AsCas12a相比,ArCas12a具有更高的溫度適應(yīng)性(25-55℃),可適用于基因組編輯及核酸檢測等。
圖3.ArCas12a順式切割活性檢測 M:Marker;C:模板雙鏈DNA
注:在crRNA的引導下可高效的切割雙鏈DNA(600 bp)產(chǎn)生兩段切割產(chǎn)物(200 bp+400 bp)
圖4.ArCas12a反式切割活性檢測
注:以雙鏈DNA模板為靶標,加入ArCas12a、crRNA(存在與模板DNA序列互補的spacer區(qū))及單鏈DNA報告探針(含有熒光報告基團)進行體外切割,當ArCas12a與crRNA及靶標DNA形成復合體后會激活反式切割活性,切割單鏈DNA報告探針,從而發(fā)出熒光。結(jié)果顯示,翌圣ArCas12a與crRNA及模板DNA形成復合體后具有反式切割活性,可剪切單鏈DNA。
Cas12b蛋白
AapCas12b Nuclease (Cat#14808ES)
AapCas12b核酸酶(又名C2c1)是由tracrRNA:crRNA(或sgRNA)介導的DNA核酸內(nèi)切酶,來源于嗜酸耐熱菌Alicyclobacillus acidophilus,在靶標雙鏈DNA存在PAM(TTN)序列的情況下,特異地剪切靶標雙鏈DNA,使DNA雙鏈斷裂并生成粘性末端。AapCas12b可不依賴PAM序列特異地剪切單鏈DNA靶標。雙鏈或單鏈DNA靶標均能激活AapCas12b的反式剪切活性(即旁路剪切活性/附屬剪切活性),即當AapCas12b酶與sgRNA、靶標DNA結(jié)合形成三元復合物后,便會被激活針對非特異序列ssDNA的反式剪切活性,將體系中的任意序列ssDNA切碎。AapCas12b最佳剪切反應(yīng)溫度為60℃,比AacCas12b更耐高溫,適用于與LAMP聯(lián)用,開發(fā)恒溫擴增/CRISPR-Cas檢測體系。
圖5.AapCas12b Nuclease (10 μM)順式切割活性驗證
注:在20 μL的反應(yīng)體系,含有帶PMA序列的雙鏈Target DNA、sgRNA、Cas12b和1×reaction buffer,在60°C下反應(yīng)30 min,85°C下滅活5 min,在瓊脂糖凝膠電泳測定結(jié)果顯示,三批次AapCas12b Nuclease (10 μM) (Cat#14808ES)均能有效切割雙鏈Target DNA,切割效果與進口品牌T*相當。
圖6.AapCas12b Nuclease (10 μM)反式切割活性驗證
注:在20 μL的反應(yīng)體系,含有帶PMA序列的雙鏈Target DNA、sgRNA、Cas12b、Report ssDNA熒光探針和1×reaction buffer,在60℃反應(yīng)1h,每30 sec采集一次熒光信號,結(jié)果顯示在Target DNA、sgRNA、Cas12b共同存在的情況下,Report ssDNA熒光探針能被切割,從而釋放熒光信號。
sgRNA合成試劑盒
Hifair® Precision sgRNA Synthesis Kit
(Cat#11355ES)
該試劑盒的應(yīng)用極為簡便,用戶只需設(shè)計一條特定的上游引物,并結(jié)合試劑盒提供的其他試劑,即可在短短4小時內(nèi)合成出20-100 μg高品質(zhì)的sgRNA。所產(chǎn)生的sgRNA具備高產(chǎn)量、高純度和高活性等優(yōu)勢,在基因編輯過程中能顯著提升編輯效率,并大幅降低脫靶現(xiàn)象的發(fā)生幾率,確?;蚓庉嫻ぷ饕愿咝屎透邷蚀_性進行。
圖7.不同時間的sgRNA的合成量
圖8.不同序列的sgRNA的合成產(chǎn)量
圖9.合成的sgRNA的純度(安捷倫2100測定)
圖10.sgRNA的剪切效率效果圖
當前,CRISPR基因編輯技術(shù)正處于快速發(fā)展的時期,整個領(lǐng)域仍在不斷成熟和完善中。隨著科學研究和技術(shù)應(yīng)用的持續(xù)推進,我們有理由相信未來將涌現(xiàn)出更多創(chuàng)新性的基因編輯工具,這些新工具將進一步拓寬該技術(shù)的應(yīng)用場景與潛力。
如果您對基因編輯有任何需求或興趣,歡迎隨時聯(lián)系我們。無論是在基礎(chǔ)研究、藥物開發(fā)、農(nóng)業(yè)生物技術(shù)、合成生物學等領(lǐng)域,我們都致力于為您提供 的技術(shù)支持和服務(wù),共同探索基因編輯帶來的無限可能。
基因編輯相關(guān)產(chǎn)品推薦
產(chǎn)品應(yīng)用 | 產(chǎn)品定位 | 產(chǎn)品名稱 | 產(chǎn)品貨號 |
通用型 | 帶NLS的SpCas9 | Cas9 Nuclease | 14701ES |
熒光觀察/流式分選 | 帶EGFP熒光標簽的SpCas9 | NLS-Cas9-EGFP Nuclease | 11364ES |
基因調(diào)控 | 無剪切酶活性的Cas9 | dCas9 Nuclease | 11351ES |
小分子量遞送 | Cas12a | ArCas12a Nuclease | 14702ES |
Cas12b | AapCas12b Nuclease | 14808ES | |
sgRNA制備 | sgRNA合成 | Hifair® Precision sgRNA Synthesis Kit | 11355ES |
sgRNA純化 | Hieff NGS® RNA Cleaner | 12602ES |
參考文獻:
[1] Kretzschmar K, Watt F M. Lineage tracing[J]. Cell, 2012, 148(1): 33-45.
[2] Hsu Y C. Theory and practice of lineage tracing[J]. Stem Cells, 2015, 33(11): 3197-3204.
[3] Chen C, Liao Y, Zhu M, et al. Dual-nuclease single-cell lineage tracing by Cas9 and Cas12a[J]. Cell Reports, 2025, 44(1).
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