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使用SpectraMax MiniMax細胞成像系統(tǒng)評估細胞遷移
簡介
細胞遷移,廣義上被定義為細胞從一個位置移動到另一個位置,在胚胎發(fā)育、創(chuàng)傷愈合等各種過程中發(fā)揮重要作用。它也是,癌細胞從原始位置擴散到身體不同部位轉移的一個關鍵參數(shù),參與包括腫瘤細胞侵襲、進入血管系統(tǒng)和遠端定植等過程1。在體外,細胞會根據(jù)營養(yǎng)物質等化學信號發(fā)生遷移,這種化學吸引力可以用于研究細胞遷移機制。通過了解癌細胞遷移的機制,可以開發(fā)新的治療方法來阻止癌癥患者的癌細胞轉移。
Corning FluoroBlokTM嵌套可以將細胞懸浮液與含化學引誘劑的底層溶液分離,使研究人員能夠測定細胞遷移或侵染。利用黑色染料處理的熒光屏蔽聚對苯二甲酸乙二醇酯(PET)膜可以有效地阻止的400-700 nm光透射。熒光標記的細胞遷移通過膜中的8.0 um孔徑達到化學引誘劑,利用酶標儀或成像系統(tǒng)通過底部讀取可以很容易檢測到細胞(圖1)。在檢測過程中遷移細胞仍能存活,可實現(xiàn)終點和時間過程的測定。
使用FluoroBlok 嵌套,從微孔板底部讀取原始熒光可用于測定細胞遷移,但這種方法存在局限性。標準化RFU(相對熒光)測量需要細胞的標準曲線,熒光細胞標記、背景熒光和其他條件的變化可能會影響數(shù)據(jù)準確性。通過直接計數(shù)細胞,研究人員可以獲得準確的細胞遷移數(shù)據(jù)。
在這篇應用文章中,我們展示了如何使用 SpectraMax i3x多功能微孔板讀板機和 SpectraMax® MiniMax 300細胞成像系統(tǒng)結合FluoroBlok嵌套測量細胞遷移以及對細胞進行成像和計數(shù)。
優(yōu)勢
采集無損的高質量細胞圖像
通過直接計數(shù)細胞獲得準確的數(shù)據(jù)
使用SoftMax Pro軟件快速識別細胞
圖 1:FluoroBlok技術。熒光標記的細胞被接種在FluoroBlok嵌套中,通過8 um孔徑遷移,從底部進行檢測。
• FluoroBlok HTS96孔多孔滲透支持系統(tǒng),采用 8.0 um高密度PET膜(Corning cat. #351163)
• SpectraMax i3x多功能微孔板讀板機(Molecular Devices cat. #i3x)
• SpectraMax MiniMax300細胞成像系統(tǒng)(Molecular Devices, cat. #5024062)
• NIH3T3細胞(ATCC cat. #CRL-1658)
• 最小必需培養(yǎng)基(MEM,Corning cat. #10-010)
• 胎牛血清(FBS,Gemini Bio-Productscat. #100-106)
• 0.05%胰蛋白酶EDTA(Corning cat. #25-051-CI)
• EarlyTox 活細胞檢測試劑盒(Molecular Devices cat. #R8342)
使用10%FBS在MEM中培養(yǎng)NIH3T3細胞。將細胞進行胰蛋白酶處理并重懸于無血清培養(yǎng)基中,然后用EarlyTox活細胞檢測
試劑盒中的4 µM 鈣黃綠素AM染色。染色后,在FluoroBlokTM嵌套中每孔加入20k 個細胞。將含有FBS的培養(yǎng)基作為細胞遷移的化學引誘劑,無血清培養(yǎng)基作為陰性對照。血清培養(yǎng)基被用作
陰性對照。
參數(shù) | 細胞計數(shù)設置 |
光學配置 | MiniMax |
讀板模式 | 成像 |
讀板類型 | 終點法 |
波長設置 | 541 nm(綠色熒光) |
成像的研究數(shù)量 | 9 |
圖像采集設置 | 541 曝光:10 ms 541 調焦:240 µm |
圖像分析設置 | 分析類型:離散目標物 識別目標物所需波長:541 nm |
表 1 采集和分析設置
在SoftMax Pro軟件中創(chuàng)建自定義板設置,以適應FluoroBlok的尺寸。在設置中的板類型窗口中選擇編輯孔板,并根據(jù)Corning提供的孔板信息修改尺寸。修改后的孔板設置被保存在新名稱下。此自定義板設置參數(shù)可用于之后的FluoroBlok實驗。MiniMax細胞成像系統(tǒng)可用于采集通過PET膜遷移的NIH3T3細胞的圖像。使用表 1中列出的采集設置,在20小時內的多個時間點采集圖像。讀板機的內部溫度被設置為37°C,以在讀板過程中最大限度地保證細胞健康。
圖 2. 目標物識別。 使用SoftMax Pro軟件采集編輯器中的點單擊(point and click)功能識別NIH3T3細胞。在圖 A中,用戶可以通過點擊已知細胞(黃色標記)來設置熒光大小和強度。軟件識別的對象標記為紫色 (B)。使用分類工具,用戶可以區(qū)分細胞(紅色掩膜)和較小的孔(藍色掩膜)(C)。
圖 3. 使用MiniMax細胞成像系統(tǒng)追蹤細胞遷移。接種細胞后0小時(A和D)、接種后20小時(B和E)以及軟件識別的對象(C和F)采集的圖像。C和F中的紅色掩膜表示分類為細胞的物體,藍色掩膜表示分類為FluoroBlok膜孔的小物體。頂行顯示含有化學引誘劑的孔,底行顯示不含化學引誘劑的孔(陰性對照)
使用SoftMax Pro軟件識別和定量遷移的NIH3T3細胞。在圖像分析設置中選擇離散目標物分析作為分析類型。根據(jù)細胞熒光強度和大小識別細胞,在軟件中創(chuàng)建自定義設置(圖 2)。通過點擊4至6個代表性
細胞,可自動設置閾值,并由軟件識別細胞。使用軟件對遷移的細胞數(shù)量進行繪制。
使用MiniMax細胞成像系統(tǒng)和SoftMax Pro軟件,在熒光染色細胞通過 FluoroBlok 孔板遷移時對其進行檢測(圖 3)。雖然在不含化學引誘劑的孔中也有一些遷移,但在化學引誘劑存在的情況下,20小時后細胞遷移增加近3倍(圖 4)。
圖 4. 細胞遷移計數(shù)。 使用SoftMax Pro軟件對NIH3T3細胞計數(shù)進行繪圖。含有趨化劑的孔以紅色顯示,陰性對照孔以綠色顯示。前兩小時內兩種條件處理的細胞均顯示發(fā)生了遷移,但含有趨化劑的孔板中的細胞計數(shù)隨著時間的推移持續(xù)增加。
SpectraMax i3x多功能微孔板讀板機和MiniMax細胞成像系統(tǒng)可與FluoroBlok細胞培養(yǎng)嵌套搭配使用,直接對高質量圖像中的細胞進行計數(shù),以測定細胞隨時間的遷移情況。用戶能夠通過點擊SoftMax Pro軟件的用戶界面快速設置細胞計數(shù)分析。與容易受細胞染色水平和背景熒光影響的原始熒光相比,圖像分析可提供準確的數(shù)據(jù)。通過將SoftMax Pro軟件的圖像采集和分析功能與96孔FluoroBlok嵌套相結合,研究人員可以快速評估大量細胞遷移數(shù)據(jù),以推進其在癌癥和許多其他生物學領域的研究。
參考文獻
1. Chambers, Ann F., Alan C. Groom, and Ian C. MacDonald. Metastasis: dissemination and growth of cancer cells in metastatic sites. Nature Reviews Cancer Nature Reviews Cancer 2.8(2002 年):563.