isoCell是英國(guó)iotaSciences公司推出的一款基于GRID專(zhuān)li技術(shù)(專(zhuān)li號(hào):WO2019197373A1)、高通量、高自動(dòng)化的單細(xì)胞可視化分選培養(yǎng)系統(tǒng)。isoCell采用微射流技術(shù),利用界面張力對(duì)細(xì)胞培養(yǎng)基(或干細(xì)胞涂層)進(jìn)行重塑,在培養(yǎng)皿上雕刻出單獨(dú)的細(xì)胞腔室GRID(可以在6厘米培養(yǎng)皿上創(chuàng)建256個(gè)單細(xì)胞腔室GRID陣列),并將細(xì)胞以納升體積全自動(dòng)地分配到各個(gè)GRID單細(xì)胞腔室中。isoCell可以避免邊界效應(yīng),利用其自帶的光學(xué)顯微鏡可以清楚地看到GRID室中的單細(xì)胞,以確保isoCell分選出的細(xì)胞100%為單細(xì)胞。isoCell可以將單細(xì)胞在GRID中培養(yǎng)成單克隆細(xì)胞系,培養(yǎng)過(guò)程中可以根據(jù)客戶(hù)需求進(jìn)行換液操作,全流程可視化監(jiān)控以保證每個(gè)單克隆細(xì)胞系均來(lái)自所挑選的單個(gè)細(xì)胞。
通過(guò)isoCell單細(xì)胞可視化分選培養(yǎng)系統(tǒng)可以實(shí)現(xiàn)高通量、自動(dòng)化、高成活率的單克隆細(xì)胞系構(gòu)建、微生物分選與培養(yǎng)、單細(xì)胞分選、單細(xì)胞組學(xué)等功能。
應(yīng)用領(lǐng)域
應(yīng)用領(lǐng)域 | 單克隆細(xì)胞系構(gòu)建 | 單細(xì)胞分選 | 單細(xì)胞組學(xué) |
高效、溫和、高度自動(dòng)化地構(gòu)建單克隆細(xì)胞系 | 100%準(zhǔn)確的單細(xì)胞分選效率 | 極大地簡(jiǎn)化單細(xì)胞組學(xué)步驟 | |
技術(shù)優(yōu)點(diǎn) | 傳統(tǒng)構(gòu)建單克隆細(xì)胞系技術(shù)受限于單細(xì)胞的高度敏感性,成功率較低,且無(wú)法保證每一個(gè)單克隆細(xì)胞系均來(lái)自單個(gè)細(xì)胞。isoCell采用GRID單細(xì)胞微腔室技術(shù),可以高度自動(dòng)化、溫和地培育單克隆細(xì)胞系,確保高達(dá)60%-70%的培育成功率。且整個(gè)操作流程均進(jìn)行可視化驗(yàn)證,保證每一個(gè)單克隆細(xì)胞系都來(lái)自單細(xì)胞。 | 傳統(tǒng)單細(xì)胞分選方法無(wú)法保證所得的樣品中只有一個(gè)單細(xì)胞,而isoCell采用GRID單細(xì)胞腔室分離與光學(xué)信號(hào)驗(yàn)證相結(jié)合的分選技術(shù),能夠保證分選所得的單細(xì)胞樣品中只有一個(gè)單細(xì)胞。 | isoCell可以將1.5 µl至200 µl的單細(xì)胞樣品直接裝移至PCR管帶或96孔板中,無(wú)縫銜接后續(xù)單細(xì)胞測(cè)序scWGA流程,極大地簡(jiǎn)化單細(xì)胞組學(xué)步驟。 |
在GRID上培育8天的單克隆細(xì)胞系 | 單細(xì)胞分選前后的GRID細(xì)胞腔室 | 單細(xì)胞的WGA結(jié)果 |
設(shè)備特點(diǎn)
- 全自動(dòng)化流程
- 操作條件溫和,對(duì)單細(xì)胞無(wú)損傷
- 全培養(yǎng)、分析流程可視化追蹤
- 單細(xì)胞分離效率高達(dá)100%
- 單克隆細(xì)胞系構(gòu)建成活率高
- 直接轉(zhuǎn)移到PCR管或96孔板
- 結(jié)構(gòu)緊湊,體積小
傳統(tǒng)單細(xì)胞分離手段無(wú)法保證所得的樣品內(nèi)100%只有一個(gè)單細(xì)胞,可能有多個(gè)細(xì)胞或細(xì)胞團(tuán),導(dǎo)致下游的實(shí)驗(yàn)出現(xiàn)誤差。且傳統(tǒng)構(gòu)建單克隆細(xì)胞系技術(shù)受限于單細(xì)胞的高度敏感性,成功率較低,也無(wú)法保證每一個(gè)單克隆細(xì)胞系均來(lái)自單個(gè)細(xì)胞。isoCell采用的GRID單細(xì)胞腔室技術(shù),可以保證100%準(zhǔn)確的單細(xì)胞分選,并在GRID中高度自動(dòng)化地直接培育單克隆細(xì)胞系,成活率高達(dá)60%以上,且通過(guò)全流程可視化監(jiān)控,保證每一個(gè)單克隆細(xì)胞系均來(lái)自于挑選的單個(gè)細(xì)胞。isoCell分選、培養(yǎng)條件溫和,可以顯著提高單細(xì)胞克隆的存活率。同時(shí)isoCell可以將單細(xì)胞樣品按照特定的體積直接轉(zhuǎn)移到96孔板或PCR管中,無(wú)縫銜接單細(xì)胞下游應(yīng)用,確保后續(xù)單細(xì)胞組學(xué)信息完整性。
應(yīng)用案例
人類(lèi)誘導(dǎo)多能干細(xì)胞(hiPSCs)的單細(xì)胞克隆
人類(lèi)誘導(dǎo)多能干細(xì)胞(hiPSCs)構(gòu)建單克隆細(xì)胞系培養(yǎng)步驟繁瑣,細(xì)胞對(duì)異常的處理和操作非常敏感,傳統(tǒng)單細(xì)胞分選容易導(dǎo)致細(xì)胞和遺傳毒性應(yīng)激的積累,進(jìn)而導(dǎo)致不良分化和多能性喪失。
使用isoCell可以溫和且自動(dòng)化地將人類(lèi)誘導(dǎo)多能干細(xì)胞(hiPSCs)進(jìn)行單細(xì)胞分選并進(jìn)行培養(yǎng),高效地培養(yǎng)hiPSCs單克隆細(xì)胞系,顯著提高了細(xì)胞分離與克隆效率(如下圖所示)。
K562細(xì)胞單細(xì)胞測(cè)序
傳統(tǒng)單細(xì)胞測(cè)序需對(duì)單細(xì)胞進(jìn)行全基因組擴(kuò)增(WGA),但傳統(tǒng)單細(xì)胞WGA受限于如何獲得單個(gè)細(xì)胞并轉(zhuǎn)移到小體積的WGA反應(yīng)中。
使用isoCell自動(dòng)將K562細(xì)胞拾取并轉(zhuǎn)移至含3.5 µl scWGA試劑的PCR管中,并無(wú)縫銜接scWGA反應(yīng)。瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果顯示(下圖),單細(xì)胞WGA的DNA樣本(+)中兩種基因均被特異性擴(kuò)增,而陰性對(duì)照(-)沒(méi)有這兩種擴(kuò)增產(chǎn)物,符合預(yù)期。
對(duì)人類(lèi)誘導(dǎo)多能干細(xì)胞 (hiPSCs) Prime 編輯構(gòu)建工程細(xì)胞系
Prime 編輯可在 HEK3 基因座中高效精確插入三個(gè)核苷酸,用于構(gòu)建工程細(xì)胞系hiPSCs。通過(guò)引入靶標(biāo)特異性 pegRNA 來(lái)編輯單個(gè)或多個(gè)基因組位點(diǎn),以進(jìn)行精確有效的基因組編輯,促進(jìn)疾病建模和功能遺傳學(xué)研究。
Prime 編輯使用與逆轉(zhuǎn)錄酶融合的 Cas9 切口酶,將 DNA 序列從“Prime 編輯"引導(dǎo) RNA (pegRNA) 復(fù)制到特定基因座。通過(guò)Prime 編輯將多西環(huán)素誘導(dǎo)型 Prime Editor 蛋白 (PE2) 整合到 iPSC 細(xì)胞系的AAVS1 基因組,之后使用isoCell分選轉(zhuǎn)入靶基因的hiPSCs細(xì)胞系,以確保細(xì)胞的單克隆性。(見(jiàn)上圖)
該研究使用isoCell來(lái)確保工程細(xì)胞系的單克隆性與準(zhǔn)確性。
參考文獻(xiàn):Bharucha N, Ataam J A, Gavidia A A, et al. Generation of AAVS1 integrated doxycycline-inducible CRISPR-Prime Editor human induced pluripotent stem cell line[J]. Stem Cell Research, 2021, 57: 102610.
膠質(zhì)母細(xì)胞瘤(GBM)通過(guò)表觀遺傳免疫編輯獲得骨髓相關(guān)轉(zhuǎn)錄程序以引發(fā)免疫逃逸
研究人員通過(guò)將多形性膠質(zhì)母細(xì)胞瘤干細(xì)胞 (GSC) 連續(xù)移植到免疫活性宿主中,發(fā)現(xiàn) GSC 通過(guò)建立增強(qiáng)的免疫抑制腫瘤微環(huán)境來(lái)免疫逃逸。從機(jī)制上講,GSC通過(guò)表觀遺傳免疫編輯過(guò)程引起,其在免疫攻擊后強(qiáng)制執(zhí)行 GSC 中穩(wěn)定的轉(zhuǎn)錄和表觀遺傳變化。研究中使用Irf8敲除細(xì)胞系實(shí)驗(yàn)證明,Irf8的激活是細(xì)胞免疫逃逸的一個(gè)重要因素,且在體內(nèi)可能通過(guò)IFNγ介導(dǎo)的激活發(fā)生。該研究使用isoCell構(gòu)建Irf8克隆敲除系。
參考文獻(xiàn):Gangoso E, Southgate B, Bradley L, et al. Glioblastomas acquire myeloid-affiliated transcriptional programs via epigenetic immunoediting to elicit immune evasion[J]. Cell, 2021, 184(9): 2454-2470. e26.
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